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  • 菌落總數(shù)檢測方法

    點擊次數(shù):1095  更新時間:2023-08-21

    菌落總數(shù)的常規(guī)檢驗方法菌落總數(shù)的常規(guī)檢驗方法(GB4789.2-2022)。

    基本操作一般包括:樣品的稀釋——傾注平皿——培養(yǎng)48(24)小時——計數(shù)報告。



     

    (一)樣品的處理和稀釋

     


    1、操作方法

    (1)以無菌操作取檢樣25g(或25mlL),放于225mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的滅菌玻璃瓶內(nèi)(瓶內(nèi)預(yù)置適當(dāng)數(shù)量的玻璃珠)或滅菌乳缽內(nèi),經(jīng)充分振要或研磨制成1:10的均勻稀釋液。

    固體檢樣在加入稀釋液后,最好置滅菌均質(zhì)器中以8000~10000r/min的速度處理1min,制成1:10的均勻稀釋液。

    (2)用1ml滅菌吸管或吸頭吸取1:10稀釋液1mL,沿管壁徐徐注入含有9mL滅菌生理鹽水或其他稀釋液的試管內(nèi),振搖試管混合均勻,制成1:100的稀釋液。

    (3)另取1mL滅菌吸管或吸頭,按上項操作順序,制10倍遞增稀釋液,如此每遞增稀釋一次即換用1支1mL滅菌吸管或吸頭

    2、無菌操作

    操作中必須有“無菌操作"的概念,所用玻璃器皿必須是滅菌的。所用剪刀、鑷子等器具也必須進行消毒處理。樣品如果有包裝,應(yīng)用75%乙醇在包裝開口處擦拭后取樣。

    操作應(yīng)當(dāng)在超凈工作臺或經(jīng)過消毒處理的無菌室進行。瓊脂平板在工作臺暴露15分鐘,每個平板不得超過15個菌落。

    3、采樣的代表性

    如系固體樣品,取樣時不應(yīng)集中一點,宜多采幾個部位。固體樣品必須經(jīng)過均質(zhì)或研磨,液體樣品須經(jīng)過振搖,以獲得均勻稀釋液。

    4、稀釋液

    樣品稀釋液主要是滅菌生理鹽水,有的采用磷酸鹽緩沖液(或0.1%蛋白胨水),后者對食品已受損傷的細菌細胞有一定的保護作用。如對含鹽量較高的食品(如醬油)進行稀釋,可以采用滅菌蒸餾水。


     

    (二)傾注培養(yǎng)

     


    1、操作方法

    (1)根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)要求或?qū)ξ廴厩闆r的估計,選擇1~3個適宜稀釋度,分別在制10倍遞增稀釋的同時,以吸取該稀釋度的吸管移取1mL稀釋液于滅菌平皿中,每個稀釋度做兩個平皿。

    (2)將涼至48℃平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基注入平皿約15mL,并轉(zhuǎn)動平皿,混合均勻。同時將平板計數(shù)瓊脂培養(yǎng)基傾入加有1mL稀釋液(不含樣品)的滅菌平皿內(nèi)作空白對照。

    (3)待瓊脂凝固后,翻轉(zhuǎn)平板,置36±1℃溫箱內(nèi)培養(yǎng)48±2h,取出計算平板內(nèi)菌落數(shù)目,乘以稀釋倍數(shù),即得每克(每毫升)樣品所含菌落總數(shù)。 

    (4)傾注用培養(yǎng)基應(yīng)在48℃水浴內(nèi)保溫,溫度過高會影響細菌生長,過低瓊脂易于凝因而不能與菌液充分混勻。如無水浴,應(yīng)以皮膚感受較熱而不燙為宜。

    傾注培養(yǎng)基的量規(guī)定不一,從12~20mL不等,一般以15mL較為適宜,平板過厚可影響觀察,太薄又易于干裂。傾注時,培基底部如有沉淀物,應(yīng)將底部棄去,以免與菌落混淆而影響計數(shù)觀察

    (5)為使菌落能在平板上均勻分布,檢液加入平皿后,應(yīng)盡快傾注培養(yǎng)基并旋轉(zhuǎn)混勻,可正反兩個方向旋轉(zhuǎn),檢樣從開始稀釋到傾注最后一個平皿所用時間不宜超過20min,以防止細菌有所死亡或繁殖。

    (6)溫較低,故多采用30℃。培養(yǎng)時間一般為48h,有些方法只要求24h的培養(yǎng)即可計數(shù)。培養(yǎng)箱應(yīng)保持一定的濕度,瓊脂平板培養(yǎng)48h后,培養(yǎng)基失重不應(yīng)超過15%。

    (7)為了避免食品中的微小顆?;蚺嗷械碾s質(zhì)與細菌菌落發(fā)生混淆,不易分辨,可同時作一稀釋液與瓊脂培養(yǎng)基混合的平板,不經(jīng)培養(yǎng),而于4℃環(huán)境中放置,以便計數(shù)時作對照觀察。

    在某些場合,為了防止食品顆粒與菌落混淆不清,可在營養(yǎng)瓊脂中加入氯化三苯四氮唑(TTC),培養(yǎng)后菌落呈紅色,易于分別。


     

    (三)計數(shù)和報告

     


    1、操作方法

    培養(yǎng)到時間后,計數(shù)每個平板上的菌落數(shù)??捎萌庋塾^察,必要時用放大鏡檢查,以防遺漏。在記下各平板的菌落總數(shù)后,求出同稀釋度的各平板平均菌落數(shù),計算出原始樣品中每克(或每mL)中的菌落數(shù),進行報告。

    2、計數(shù)

    到達規(guī)定培養(yǎng)時間,應(yīng)立即計數(shù)。如果不能立即計數(shù),應(yīng)將平板放置于0-4℃,但不得超過24h。

    3、稀釋度選擇及菌落數(shù)報告方式

    (1)若只有一個稀釋度平板上的菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi),計算兩個平板菌落數(shù)的平均值,再將平均值乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù),作為每克(或毫升)中菌落總數(shù)結(jié)果。

    (2)若有兩個連續(xù)稀釋度的平板菌落數(shù)在適宜計數(shù)范圍內(nèi)時,按式(l)計算:

    N=∑C/(n1+0.1n2)d……………………(1)

    式中:
    N―樣品中菌落數(shù);
    ∑C―平板(含適宜范圍菌落數(shù)的平板)菌落數(shù)之和;
    n 1―第一個適宜稀釋度接種平板個數(shù)
    n2―第二個適宜稀釋度接種平板個數(shù);
    d―稀釋因子(第一稀釋度)。

    (3)若所有稀釋度的平板上菌落數(shù)均大于300,則對稀釋度最高的平板進行計數(shù),其他平板可記錄為多不可計,結(jié)果按平均菌落數(shù)乘以最高稀釋倍數(shù)計算。

    (4)若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均小于30,則應(yīng)按稀釋度低的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算。

    (5)若所有稀釋度(包括液體樣品原液)平板均無菌落生長,則以小于1乘以低稀釋倍數(shù)計算。

    (6)若所有稀釋度的平板菌落數(shù)均不在30~300之間,其中一部分小于30或大于300時,則以接近30或300的平均菌落數(shù)乘以稀釋倍數(shù)計算。

    4、菌落總數(shù)的報告
    (1)菌落數(shù)在100以內(nèi)時,按“四舍五人"原則修約,采用兩位有效數(shù)字報告。 

    (2)大于或等于100時,第三位數(shù)字采用“四舍五人"原則修約后,取前兩位數(shù)字,后面用0代替位數(shù);也可用10的指數(shù)形式來表示,按“四舍五入"原則修約后,采用兩位有效數(shù)字。

    (3)若所有平板上為蔓延菌落而無法計數(shù),則報告菌落蔓延。

    (4)若空白對照上有菌落生長,則此次檢測結(jié)果無效。

    (5)稱重取樣以CFU/g為單位報告,體積取樣以CFU/mL 為單位報告。


     

    (四)特別注意

     


    1、不同稀釋度的菌落數(shù)應(yīng)與稀釋倍數(shù)成反比(同一稀釋度的二個平板的菌落數(shù)應(yīng)基本接近),即稀釋倍數(shù)愈高菌落數(shù)愈少,稀釋倍數(shù)愈低菌落數(shù)愈多。如出現(xiàn)逆反現(xiàn)象,則應(yīng)視為檢驗中的差錯(有的食品有時可能出現(xiàn)逆反現(xiàn)象,如酸性飲料等),不應(yīng)作為檢樣計數(shù)報告的依據(jù)。

    2、當(dāng)平板上有鏈狀菌落生長時,如呈鏈狀生長的菌落之間無任何明顯界限,則應(yīng)作為一個菌落計,如存在有幾條不同來源的鏈,則每條鏈均應(yīng)按一個菌落計算,不要把鏈上生長的每一個菌落分開計數(shù)。如有片狀菌落生長,該平板一般不宜采用,如片狀菌落不到平板一半,而另一半又分布均勻,則可以半個平板的菌落數(shù)乘2代表全平板的菌落數(shù)。

    3、當(dāng)計數(shù)平板內(nèi)的菌落數(shù)過多(即所有稀釋度均大于300時),但分布很均勻,可取平板的一半或1/4計數(shù)。再乘以相應(yīng)稀釋倍數(shù)作為該平板的菌落數(shù)。


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